細胞爬片制備詳細過(guò)程
發(fā)布時(shí)間:2014/2/7 16:52:07 瀏覽次數:11566 [字號:大 中 小] [關(guān)閉此頁(yè) 打印此頁(yè)]
【爬片的準備】
1.爬片可用一般的蓋玻片,也可用專(zhuān)用爬片;
2.應用蓋玻片,可根據自己的需要剪裁成合適的大小,以備置于6孔板、12孔板或24孔板;裁剪時(shí)可用前護士輸液用于打開(kāi)玻璃安瓶的小沙輪,或者是口腔科的那種小沙輪,輕輕劃一下后,稍用力一掰就分開(kāi)了。
如果接種大皿的話(huà),我一般不將蓋玻片切開(kāi),直接清潔后放入培養皿中,到染色時(shí)再將之切開(kāi),這樣既保證了細胞均一性,又可同時(shí)做幾個(gè)指標的染色。
3.將剪裁好的爬片,置于濃硫酸中浸泡并過(guò)夜,第二天先用自來(lái)水沖洗20遍,再置于無(wú)水酒清中浸泡6小時(shí),再用三蒸水沖洗3遍(個(gè)人認為主要目的是將酸沖洗干凈就可以了,如果不干凈的話(huà),細胞帖壁不好),放在飯盒或者玻璃培養皿中烘干后進(jìn)行高壓消毒。
4.高壓后取出放入烤箱中烤干,備用??靖珊罂煞湃氤瑑襞_中。
5.關(guān)于多聚賴(lài)氨酸,很多人都將玻片用此處理,以使細胞與玻片結合更牢。但我在做爬片時(shí)從來(lái)沒(méi)用過(guò)多聚賴(lài)氨酸,細胞貼壁仍然很好,且在做后續的免疫細胞化學(xué)染色、TUNEL等凋亡檢測、免疫熒光等也從未脫過(guò)片。
【細胞爬片】
1.胰酶消化細胞后計數重懸細胞于完全培養基中。
2.加細胞時(shí),根據玻片的大小,先在每個(gè)孔里準備放爬片的位置滴少量培養基,目的是使玻片與培養皿靠培養基的張力粘合到一起,然后放玻片,防止加細胞懸液時(shí)玻片漂起,造成雙層細胞貼片。整個(gè)過(guò)程注意無(wú)菌操作。
3.根據自己的需要選擇合適的細胞密度種入培養板內即可
4.待細胞貼壁后,可去上清加含藥培養基。
5.按照實(shí)驗設計,作用一定時(shí)間后取玻片。取玻片時(shí)由于玻片與培養皿底結合較緊,張力較大,我一般將注射器針頭針尖向背面弄個(gè)小鉤,這樣將爬片輕輕勾起,用小鑷子取出就可以了。如果要做諸如24h,48h,72h等這樣時(shí)間點(diǎn)的實(shí)驗的話(huà),將所需數量的爬片取出時(shí)應用酒精燈火焰燒一下針頭和鑷子。末取出的可接著(zhù)繼續培養。
【細胞爬片的固定】
細胞爬片取出后,一般用PBS洗2遍,然后再做固定。當然,根據研究目的,PBS洗也不是一定要做的,比如做凋亡的TUNEL染色時(shí)就避免洗,因為凋亡的細胞在洗的過(guò)程中有可能會(huì )脫落。
另外在保存細胞爬片的時(shí)候,我一般用培養皿或板,先在皿底放一層面巾紙,然后再放爬片,這樣方便做實(shí)驗時(shí)取片。然后蓋上蓋子,并在蓋子上做標記,為避免混淆,可用透明膠帶將蓋子和皿連在一起。一般-20℃保存2-3個(gè)月的片子做免疫組化是沒(méi)有問(wèn)題的。
以下為常用的固定液
1. 冷丙酮 可用于一般的免疫組化染色。
將純的丙酮預先放入冰箱-20℃后便為冷丙酮(放心,丙酮在此溫度不會(huì )為固體的)細胞爬片取出后,PBS洗2遍,便可加入冷丙酮于-20℃(丙酮有很強的揮發(fā)性,注意將含有丙酮和爬片的器皿蓋嚴,防止其揮發(fā))固定10分鐘。取出后,室溫吹干,然后放入-20℃保存。
2. 多聚甲醛(常用4%):可用于免疫電鏡;也可用于免疫熒光以及TUNEL染色。
主要檢測組織內一些性能嬌弱的抗原特別是細胞表面抗原,例如各類(lèi)淋巴細胸分化決定簇(CD)、主要組織相容性抗原等
室溫固定15分鐘后,將表面液體吹干,入-20℃保存
3. 95%乙醇,可用于免疫組化。
優(yōu)點(diǎn):穿透性強、抗原性保存較好。
缺點(diǎn):但醇類(lèi)對低分子蛋白質(zhì)、多肽及胞漿內蛋白質(zhì)保存效果較差,使蛋白變性的作用輕,固定后可再溶解;染色過(guò)程中,溫育時(shí)間長(cháng),抗原可流失而減弱反應強度
室溫固定15分鐘后,將表面液體吹干,入-20℃保存
4. 甲醛(福爾馬林)應用最廣
優(yōu)點(diǎn):形態(tài)結構保存好,且穿透性強,
缺點(diǎn): 甲醛放置過(guò)久可氧化為甲酸,使溶液pH降低,影響染色; 分子間交聯(lián)形成的網(wǎng)格結構可能部分或完全掩蓋某些抗原決定簇,使之不能充分暴露??稍斐杉訇幮缘娜旧Y果。
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